Phagocytic activity and toxicity of the aqueous extract of Schinus molle L. on Mus musculus BALB/c
Keywords:
Schinus molle, immunomodulation, toxicity, medicinal plants, macrophages, phagocytosis.Abstract
Introduction: Traditional medicine could be a safe alternative to enhance the immunity of immunocompromised patients prone to recurrent infections.
Objective: To evaluate the phagocytic activity and in vivo toxicity of the aqueous extract of Schinus molle L. on Mus musculus BALB/c.
Material and Methods: Experimental study that used a single dose of aqueous extract of Schinus molle leaves of 2000 mg/kg. In vivo phagocytosis was determined in 10 specimens of M. musculus BALB/c that met the inclusion and exclusion criteria, which were randomly and equally distributed in the control and experimental groups. The specimens of the experimental group were inoculated intraperitoneally with 0.5 ml of Staphylococcus aureus suspension and 0.5 ml of the aqueous extract. Those of the control group were inoculated with 0.5 ml of the same bacterial inoculum and 0.5 ml of sterile saline solution. The toxicity of the extract was evaluated by the method of the acute toxicity classes in 12 specimens of mice with the same characteristics that fulfilled the same criteria applied in the evaluation of phagocytosis in vivo.
Results: The results demonstrate that 57.1% of the macrophages exposed to the aqueous extract of S. molle showed significant phagocytic activity, finding an average of 21 phagocytosed bacteria per macrophage. No significant signs or symptoms of toxicity were evidenced in the specimens during the 14 days of experimentation.
Conclusions: The aqueous extract of S. molle significantly increased in vivo phagocytosis of peritoneal macrophages from M. musculus BALB/c, without clinical evidence of toxicity and in the absence of mortality.
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References
1. Sattler S. The Role of the Immune System Beyond the Fight Against Infection. Adv Exp Med Biol [Internet]. 2017 [Citado 20/02/2022];1003:[Aprox. 11 p.]. Disponible en: https://link.springer.com/chapter/10.1007/978-3-319-57613-8_1
2. Alonso A, Candelaria B, Valdés L, Alonso A, Candelaria B, Valdés L. Inmunodeficiencias primarias: un reto para la inmunogenética. Rev Cuba Reumatol [Internet]. 2020 [Citado 20/02/2022];22(2):[Aprox. 28 p.]. Disponible en:http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S181759962020000200009
3. Corell-Doménech M. Terapeutas alternativos en México y la estrategia de la OMS sobre medicina tradicional 2014-2023: comunicación, creencias y factores socio-económicos. Perspect comun [Internet]. 2019 [Citado 22/02/2022];12(1):[Aprox. 18 p.]. Disponible en: http://dx.doi.org/10.4067/S0718-48672019000100059
4. Feitosa V, Dantas R, Wanderley Y, Nascimento WW. Atividade antimicrobiana de plantas medicinais indicadas para uso no Sistema Único de Saúde. Rev Cubana Estomatol [Internet]. 2019 [Citado 22/02/2022];56(4):e1159. Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_abstract&pid=S0034-75072019000400001
5. Gallegos-Zurita M, Gallegos-Z D. Plantas medicinales utilizadas en el tratamiento de enfermedades de la piel en comunidades rurales de la provincia de Los Ríos Ecuador. An Fac Med [Internet]. 2017 [Citado 24/02/ 2022];78(3):[Aprox. 6 p.]. Disponible en: http://www.scielo.org.pe/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S102555832017000300011&lng=es
6. Perejón-RubioI del R, García-Giménez MD. Plantas medicinales que actúan sobre el sistema inmune. Ars Pharm [Internet]. 2021 [Citado 24/02/ 2022];63(1):[Aprox. 13 p.]. Disponible en: https://revistaseug.ugr.es/index.php/ars/article/view/22187
7. Ahmed HM, Babakir-Mina M. Investigation of rosemary herbal extracts (Rosmarinus officinalis) and their potential effects on immunity. Phytother Res [Internet]. 2020 [Citado 27/02/2022];34(8):[Aprox. 9 p.]. Disponible en: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/32086980/
8. Ramírez L, Mostacero J, López E, De La Cruz AJ, Gil AE. Aspectos etnobotánicos de Cuspón, Perú: Una comunidad campesina que utiliza 57 especies de plantas en sus diversas necesidades. Scientia Agropecuaria [Internet]. 2020 [Citado 27/02/2022];11(1):[Aprox. 7 p.]. Disponible en: https://revistas.unitru.edu.pe/index.php/scientiaagrop/article/view/2799
9. Pawlowski Â, Ricachenevsky FK, Machado ME, Da Silva ER, Zini CA, Soares GLG. Schinus Essential Oils: Chemical Composition by GC×GC-TOFMS and Phytotoxic Effects on Arabidopsis thaliana. Chem Biodivers [Internet]. 2022 [Citado 27/02/2022];19(12):[Aprox. 11 p.]. Disponible en: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/36259377/
10. Pereira AC. Schinus molle e Schinus terebinthifolius: Revisão sistemática da classificação, e aspectos químicos, fitoquímicos, biológicos e farmacobotânicos. Braz J Nat Sci [Internet]. 2020 [Citado 01/ 03/ 2022];3(3):[Aprox. 23 p.]. Disponible en: https://bjns.com.br/index.php/BJNS/article/view/109
11. Kim MJ, Kim DW, Kim JG, Shin Y, Jung SK, Kim Y-J. Analysis of the Chemical, Antioxidant, and Anti-Inflammatory Properties of Pink Pepper (Schinus molle L.). Antioxidants [Internet]. 2021 [Citado 01/03/2022];10(7):[Aprox. 14 p.]. Disponible en: https://www.mdpi.com/2076-3921/10/7/1062/htm
12. do Prado AC, Garces HG, Bagagli E, Rall VLM, Furlanetto A, Fernandes JA, et al. Schinus molle essential oil as a potential source of bioactive compounds: antifungal and antibacterial properties. J Appl Microbiol. [Internet]. 2019 [Citado 04/03/2022];126(2):[Aprox. 6 p.]. Disponible en: https://sfamjournals.onlinelibrary.wiley.com/doi/10.1111/jam.14157
13. El-Nashar HAS, Mostafa NM, Abd El-Ghffar EA, Eldahshan OA, Singab ANB. The genus Schinus (Anacardiaceae): a review on phytochemicals and biological aspects. Nat Prod Res [Internet]. 2022 [Citado 04/03/2022];36(18):[Aprox. 16 p.]. Disponible en: http://dx.doi.org/10.1080/14786419.2021.2012772
14. Turchetti G, Garzoli S, Laghezza V, Sabia C, Iseppi R, Giacomello P, et al. Antimicrobial Testing of Schinus molle (L.) Leaf Extracts and Fractions Followed by GC-MS Investigation of Biological Active Fractions. Molecules [Internet]. 2020 [Citado 05/03/2022];25(8):[Aprox. 15 p.]. Disponible en: https://www.mdpi.com/1420-3049/25/8/1977
15. Alfaro-Pérez MY, Ruiz-Barrueto MA. Efecto antibacteriano in vitro del extracto acuoso de Schinus molle (molle) sobre Staphylococcus aureus ATCC 25923. REBIOL [Internet]. 2018 Dic [Citado 05/03/2022];38(1):[Aprox. 12 p.]. Disponible en: https://revistas.unitru.edu.pe/index.php/facccbiol/article/view/2145
16. Gruszycki MR, Tauguinas AL, Báez CM, Alba DA, Gruszycki AE. Importancia de la farmacovigilancia en medicina herbaria. Rev cubana Plant Med [Internet]. 2017 [Citado 05/03/2022];22(1):[Aprox. 10 p.]. Disponible en: http://scielo.sld.cu/pdf/pla/v22n1/pla03117.pdf
17. Paixao A, Mancebo B, Regalado AI, Chong D, Sánchez LM. Evaluación de la Toxicidad Aguda Oral del extracto etanólico de Tephrosia vogelii Hook (kalembe). Rev Salud Anim [Internet]. 2017 [Citado 08/03/2022];39(2):[Aprox. 8 p.]. Disponible en: http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0253-570X2017000200002
18. Pérez M, Jiménez EE, Boffill M, González DM, Verdecía B, Blanco F. Evaluación de la Toxicidad Aguda de un Extracto de Boldoa purpurascens Cav. por el Método de las Clases. Lat Am J Pharm [Internet]. 2008 [Citado 08/03/2022];27(2) [Aprox. 4 p.]. Disponible en: http://www.latamjpharm.org/trabajos/27/2/LAJOP_27_2_2_5_MJAVE6D8JF.pdf
19. Velázquez ML, Anhuamán R, Agreda-Callirgos J, Agreda - Gaitán J, Muñoz EJ, Alayo G. Efecto del Temephos sobre la respuesta inmune innata y adaptativa de Mus musculus BALB/c inoculado con Candida albicans. REBIOL [Internet]. 2013 [Citado 10/03/2022];33(2):[Aprox. 7 p.]. Disponible en: https://revistas.unitru.edu.pe/index.php/facccbiol/article/view/556
20. Saravia V, Luján M, Chávez M, Becerra L, Jiménez Marianela, Cabeza J. Efecto de la savia liofilizada de Musa acuminata Colla “plátano de seda” sobre la respuesta inmune de Mus musculus BALB/c frente a Escherichia coli O157:H7. UCV-Scientia [Internet]. 2011 [Citado 10/03/2022];3(1):[Aprox. 6 p.]. Disponible en: https://dialnet.unirioja.es/descarga/articulo/6181482.pdf
21. Organización para la Cooperación y el Desarrollo Económicos (OCDE). Acute Oral Toxicity– Up-and-Down Procedure. Guide N° 425 [Internet]. Francia: Organización para la Cooperación y el Desarrollo Económicos; 2001 [Citado el 14/03/2022]. Disponible en: http://www.oecd.org
22. National Research Council (US) Institute for Laboratory Animal Research. The Development of Science-based Guidelines for Laboratory Animal Care: Proceedings of the November 2003 International Workshop [Internet]. Washington (DC): National Academies Press (US); 2004 [Citado el 14/03/2022]. Disponible en: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/20669462/
23. Zimmermann M. Ethical guidelines for investigations of experimental pain in conscious animals. Pain [Internet]. 1983 [Citado el 14/03/2022];16(2):109-10:[Aprox. 5 p.]. Disponible en: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/6877845
24. Instituto Nacional de Salud. Guía de manejo y cuidado de animales de laboratorio: ratón [Internet]. Lima: Ministerio de Salud, Instituto Nacional de Salud; 2008 [Citado el 14/03/2022]. Disponible en: http://bvs.minsa.gob.pe/local/INS/962_INS68.pdf
25. Amaro J, Iparraguirre ME. Efecto del consumo de extracto de alfalfa (Medicago sativa L.) sobre el recuento de leucocitos, en ratones (Mus musculus). Rev Med Hered [Internet]. 2018 [Citado el 14/03/2022];29(2):[Aprox. 4 p.]. Disponible en: http://www.scielo.org.pe/scielo.php?script=sci_abstract&pid=S1018130X2018000200006&lng=es&nrm=iso
26. Ishida M, Nishi K, Kunihiro N, Onda H, Nishimoto S, Sugahara T. Immunostimulatory effect of aqueous extract of Coriandrum sativum L. seed on macrophages. J Sci Food Agric [Internet]. 2017 [Citado 14/03/2022];97(14):[Aprox. 9 p.]. Disponible en: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/28369918/
27. Doleski PS, Ferreira CH, Calil J, Palermo M. Composición química y actividad biológica del aceite esencial de Schinus molle L. Rev Cuba Farm [Internet]. 2015 [Citado 14/03/2022];49(1):[Aprox. 11 p.]. Disponible en: http://scielo.sld.cu/pdf/far/v49n1/far13115.pdf
28. Quintans JSS, Shanmugam S, Heimfarth L, Araújo AAS, Almeida JRGDS, Picot L, et al. Monoterpenes modulating cytokines - A review. Food Chem Toxicol [Internet]. 2019 [Citado 18/03/2022];123:[Aprox. 17 p.]. Disponible en: https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/30389585/
29. Maleki SJ, Crespo JF, Cabanillas B. Anti-inflammatory effects of flavonoids. Food Chem [Internet]. 2019 [Citado 20/03/2022];299:[Aprox. 10 p.]. Disponible en: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S0308814619312300?via%3Dihub
30. Guerriero JL. Macrophages: Their Untold Story in T Cell Activation and Function. Int Rev Cell Mol Biol [Internet]. 2019 [Citado 20/03/2022];342:[Aprox. 20 p.]. Disponible en: https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S1937644818300698?via%3Dihub
31. Iannacone J, Alvariño L. Toxicidad de Schinus molle L. (Anacardiaceae) a cuatro controladores biológicos de plagas agrícolas en el Perú. Acta Zool Mex. 2010;26(3): 603-15.
32. Iannacone J, Lamas G. Efectos toxicológicos de extractos de molle (Schinus molle) y lantana (Lantana camara) sobre Chrysoperla externa (Neuroptera: Chrysopidae), Trichogramma pintoi (Hymenoptera: Trichogrammatidae) y Copidosoma koehleri (Hymenoptera: Encyrtidae) en Perú. Agricultura Técnica. 2003; 63(4): 347-60.
33. Murkunde YV. Necropsy Procedures for Laboratory Animals. Singapore: Springer; 2020.
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